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应用(Application)
SL3500 智能LED光源

时间:2024-07-08

作者:易科泰

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简介:SL3500 智能LED光源由高能LED阵列组成,可以实现多种控制模式,如毫秒级闪光、持续光照和简谐调制光,也可以通过专用软硬件提供的用户自定义程序模拟各种自然光照周期变化。不同标准型号能够提供从蓝光到远红光的各种光质及光谱组成。

  SL3500 智能LED光源由高能LED阵列组成,可以实现多种控制模式,如毫秒级闪光、持续光照和简谐调制光,也可以通过专用软硬件提供的用户自定义程序模拟各种自然光照周期变化。不同标准型号能够提供从蓝光到远红光的各种光质及光谱组成。

应用领域

  • 植物逆境研究,作为胁迫光源
  • 光合作用或者叶绿素荧光测定,对大量植物样品进行光适应
  • 植物培养研究,组建高光强植物生长箱,可模拟真实光照条件
  • 植物生长与发育研究,模拟光强、光质与周期变化
  • 生物医学等其他应用,可作为辅助光源

功能特点

  • 高光强输出,距离光源20cm处,光强可达3,000 µmol(photon)/m2.s
  • 光强1% - 100%无级调控
  • 可进行秒到小时尺度上的时间设置调整
  • 可进行光强和时间的设定控制:

-通过控制器手动调节
-通过光源控制器或电脑软件的自定义程序自动控制并模拟日升日落等周期变化

  • 通过光源控制器或电脑软件控制给光制度(闪光,持续光照,用户自定义调制程序)
  • 可选标准光质光源:冷白光、暖白光、深蓝光、红橙光或三原色红绿蓝+远红光,可定制从UVA紫外到红外的各种光质
  • LED寿命可达60000-70000小时持续光照
  • 光源与控制器可自动制冷

 

仪器型号

SL3500-A

  • 光源板面积:13cm×13cm
  • 标准光质:冷白光、品蓝光、蓝光、红橙光可选其一,其他颜色可定制

SL3500-B

  • 光源板面积:20 cm×20 cm
  • 标准光质:冷白光、品蓝光、蓝光、红橙光可选其一,其他颜色可定制

SL3500-C

  • 光源板面积:20 cm×20 cm
  • 标准光质:深红光、绿光、品蓝光三原色,附加远红光LED灯

SL3500-D

  • 光源板面积:30 cm×20 cm
  • 标准光质:冷白光、品蓝光、蓝光、红橙光可选其一,其他颜色可定制

SL3500-E

  • 光源板面积:30 cm×20 cm
  • 标准光质:深红光、绿光、品蓝光三原色,附加远红光LED灯

SL3500-A               SL3500-B              SL3500-C

SL3500-D                                                                  SL3500-E

其他技术参数

  • 光强:0-3,000 µmol(photon)/m2.s(距离20cm测量)
  • 光强控制:总输出0-100%精确调控
  • 控制方式:标配为手动控制,可选软件控制或光源控制器
  • 通讯端口:I2C
  • 功率:75-500W(与型号和光质有关)
  • 电压:90-240V

控制软件Light Studio 485+光源控制器LC 500(可选)

  • 用户自定义设置程序,通过图形界面进行设置
  • 模拟昼夜、黄昏与黎明
  • 光照模式、光强和时间设置(从秒到小时)的精确控制
  • 特殊模式可发射50μs的脉冲闪光(需要LC500联合操控)
  • 可支持无限个逻辑光源通道、254个物理光学设备,每个逻辑通道(光源、光质)可以独立设置和控制
  • 光源通道校准与编组
  • 根据特定预设程序进行光源调制(持续光照,脉冲光,正弦波,三角脉冲)

光源控制器 LC 100(可选)

  • 用户界面友好,四键操作。
  • 光照模式、光强和时间设置(从秒到小时)的精确控制
  • 支持极短脉冲闪光(微秒级)                                                   
  • 可支持高达4种光源或4种颜色,每种光源(颜色)可以独立设置和控制
  • 根据特定预设程序进行光源调制(持续光照,脉冲光,正弦波,三角脉冲)
  • 用户自定义程序可设置最多224个光照变化阶段(可选)
  • 多云天气模拟程序(可选)
  • 独立工作,无需PC

 

标准组件支架(可选)

  • 可安装4个光源,高度角度可调

参考文献:

  • Miao Y, Jia C, Hua Y, et al. Measurement of the concentration distribution of hydrogen jets using adaptive stream stripe-background oriented schlieren (ASS-BOS)[J]. International Journal of Hydrogen Energy, 2024, 77: 281-290.
  • Nies T, Matsubara S, Ebenhöh O. A mathematical model of photoinhibition: exploring the impact of quenching processes[J]. in silico Plants, 2024, 6(1): diae001.
  • Din A M U, Mao H T, Khan A, et al. Photosystems and antioxidative system of rye, wheat and triticale under Pb stress[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2023, 249: 114356.
  • Orekhova A, Barták M, Casanova‐Katny A, et al. Resistance of Antarctic moss Sanionia uncinata to photoinhibition: Chlorophyll fluorescence analysis of samples from the western and eastern coasts of the Antarctic Peninsula[J]. Plant Biology, 2021, 23(4): 653-663.
  • Orzechowska A, Trtílek M, Tokarz K, et al. A study of light-induced stomatal response in Arabidopsis using thermal imaging[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2020, 533(4): 1129-1134.
  • Schwartz S H, Hendrix B, Hoffer P, et al. Carbon dots for efficient small interfering RNA delivery and gene silencing in plants[J]. Plant physiology, 2020, 184(2): 647-657.
  • Górecka M, Lewandowska M, Dąbrowska‐Bronk J, et al. Photosystem II 22kDa protein level‐a prerequisite for excess light‐inducible memory, cross‐tolerance to UV‐C and regulation of electrical signalling[J]. Plant, Cell & Environment, 2020, 43(3): 649-661.

 

 

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